new5

بررسي مقايسه ای اثرات زئولیت و پامیس در جذب آرسنیک از آب

توضیحات

106 صفحه

فایل Word

دانشکده منابع طبیعی

گروه شیلات

عنوان:

بررسي مقايسه­ای اثرات زئولیت و پامیس در جذب آرسنیک از آب و کاهش تجمع آن در بافت عضله ماهي کپور معمولي (Cyprinus carpio)

 

چکیده

در این مطالعه بررسي مقايسه ای اثرات زئولیت و پامیس در جذب آرسنیک از آب و کاهش تجمع آن در بافت عضله ماهي کپور معمولي (Cyprinus carpio) انجام گرفت. ابتدا پیش از استفاده از مواد جاذب، میزان جذب آرسنیک توسط مواد جاذب در سیستم های ناپیوسته بررسی شد. ابتدا در یک محلول با حجم mL 100 و غلظت mg/L 100 آرسنیک با دوز جاذب g/L 3 قدرت جذب هر یک از جاذب ها تعیین گردید. دو گروه از جاذب های پامیس و کلینوپتیلولیت در این فرآیند بررسی شدند که نتایج نشان داد که آماده سازی باعث کاهش کارایی جذب (R) و ظرفیت جذب در زئولیت و پامیس می شود، بنابراین در طول آزمایش از زئولیت و پامیس معمولی استفاده شد. سپس برای تعیین غلظت های حاد و مزمن آرسنیک در ماهی کپور معمولی LC50 در مدت 96 ساعت با استفاده از نسخه 5/1 نرم افزار EPA Probit Analysis (منتشر شده توسط سازمان حفاظت محيط زيست آمريکا) مورد تجزیه و تحلیل قرار ‌گرفت انجام گرفت. نتایج به دست آمده LC50برای آرسنیک mg/L 48/9 به‌ دست آمد. با استفاده از نتایج این آزمایش مقادیر حاد و تحت کشنده آرسنیک برای ماهی مورد آزمایش تعیین گردید. سپس قابلیت تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی کپور معمولی در حضور یا عدم حضور زئولیت و پامیس مورد بررسی قرار گرفت. در این مطالعه برای رسیدن به بهترین شرایط جذب و هم‌چنین بررسی اثر متقابل متغیرهای مستقل از طراحی آماری ایجاد شده از نرم افزار (Design Expert.7.0) و به روش مطالعه سطح پاسخ (RSM) و طراحی اولیه ترکیبی مرکزی (CCD) استفاده گردید. متغیرهای مستقل شامل: غلظت آرسنیک، دوز جاذب زئولیت و پومیس هستند. هم‌چنین غلظت آرسنیک تجمع یافته در بافت عضله ماهی و غلظت آمونیاک آب به عنوان متغیر وابسته (پاسخ) مورد بررسی قرار گرفتند. بررسی آماری هر یک از متغیرهای مستقل با متغیرهای وابسته از طریق آزمون ANOVA انجام گرفت. نتایج نشان داد که ضریب تبیین (R2) برای تجمع آرسنیک در حضور کلینوپتیلولیت در بافت عضله ماهی 528/0 و برای آمونیاک 913/0 به‌ دست آمد و در حضور پامیس برای تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی 665/0 و برای آمونیاک 928/0 به‌ دست آمد. با توجه به نتایج به دست آمده از این تحقیق زئولیت بطور معنی داری سبب کاهش تجمع آرسنیک در عضلات می شوددر صورتی که کارایی پامیس در جذب آمونیاک از آب بطور معنی داری بیشتر از زئولیت است) 5%.( p ≤ .

واژه های کلیدی: کلینوپتیلولیت، پامیس، روش پاسخ سطح، آرسنیک، LC50

 

 

فهرست مطالب

فصل اول: مقدمه و کلیات
1- مقدمه و کلیات 2
1-1- مقدمه 2
1-2- ماهی کپور معمولی 2
1-3- فلزات سنگین 2
1-4- آرسنیک 3
1-4-1- تاریخچه و ویژگی کلی آرسنیک 3
1-4-2- مصرف آرسنیک و کاربرد آن 4
1-4-3- مشکلات آرسنیک در جهان 4
1-4-3- منابع و فراوانی آرسنیک در محیط 5
1-5- آمونیاک در آبزی پروری 12
1-6- حذف آرسنیک و آمونیاک از محیط پرورش ماهی 14
1-6-1- رسوبدهی شیمیایی 15
1-6-2- تعویض یونی 15
1-6-3- فیلتر غشایی 16
1-6-4- درمان الکتروشیمیایی 16
1-6-5- جذب 17
1-7- زئولیت 18
1-8- پامیس 20
1-9- روش طراحی آزمایش 21
1-10- ضرورت انجام پژوهش 23
1-11- اهداف پژوهش 24
1-12- سؤالات پژوهش 24
1-13- فرضیات پژوهش 24
فصل دوم: بررسی منابع
2- مروری بر پژوهش های پیشین 26
2-1- پژوهش هایی در مورد تست سمیت حاد و مزمن آرسنیک در موجودات آبزی 26
2-2- پژوهش هایی در مورد کاربرد زئولیت در حذف فلزات سنگین 27
2-3- پژوهش هایی در مورد کاربرد زئولیت در حذف آمونیاک 28
2-4- پژوهش هایی در مورد کاربرد زئولیت در حذف آمونیاک هنگام حمل و نقل ماهی 30
2-5- پژوهش هایی در مورد کاربرد پامیس در حذف فلزات سنگین 31
فصل سوم: مواد و روش ها
3- مواد و روش ها 34
3-1- مواد اولیه مورد استفاده 34
3-1-1- ماهی 34
3-1-2- مواد شیمیایی 34
3-1-3- جاذب مورد استفاده 34
3-2- روش کار 34
3-2-1- آماده‌سازی جاذب ها 34
3-2-2- تهیه استوک 35
3-2-3- آزمایش قابلیت جذب آرسنیک توسط پامیس و زئولیت در سیستم ناپیوسته 35
3-2-4- تهیه استاندارد و منحنی کالیبراسیون 36
3-2-5- بررسی سمیت حاد آرسنیک در ماهی کپورمعمولی 37
3-2-6- بررسی قابلیت تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی کپور در حضور یا عدم حضور زئولیت و پامیس 38
3-2-7- آزمایش تست مزمن آرسنیک بر روی ماهی در مدت 21 روز 40
3-2-8- خشک کردن بافت عضله ماهی 41
3-2-9- روش هضم بافت عضله ماهی در نمونه‌ها 42
3-2-10- خواندن با استفاده از دستگاه جذب اتمی 43
3-3- سنجش آمونیاک 44
3-4- تحلیل گرافیکی و تعیین رگرسیون داده‌های به‌ دست آمده 44

فصل چهارم: نتایج
4- نتایج 47
4-1- نتایج مربوط به بررسی قابلیت جذب آرسنیک توسط پامیس و زئولیت 47
4-2- نتایج تست سمیت حاد 47
4-3- نتایج طراحی ترکیبی مرکزی (CCD) برای تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی و آمونیاک آب در مدت 21 روز با استفاده از جاذب کلینوپتیلولیت و پامیس 49
4-4- آنالیز آماری و برازش مدل 51
4-5- تأثیر متغیرهای فرآیند بر تجمع آرسنیک دربافت عضله ماهی و آمونیاک در 21 روز توسط دو جاذب کلینوپتیلولیت و پامیس 54
4-6- بهینه سازی متغیرهای فرآیند 56
فصل پنجم: بحث و نتیجه گیری و پیشنهادات
5- بحث و نتیجه گیری 60
5-1- بررسی مقایسه ای کارایی جذب و ظرفیت جذب در جاذب ها 60
5-2- بررسی غلظت کشنده آرسنیک و LC50 و درصد مرگ و میر در ماهی کپور معمولی 61
5-3- بررسی آنالیزهای آماری و برازش مدل 62
5-4- بررسی تأثیر متغیرهای فرآیند بر تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی و آمونیاک آب در 21 روز توسط دو جاذب کلینوپتیلولیت و پامیس 65
5-5- بهینه سازی متغیرهای فرآیند 67
نتیجه گیری 67
پیشنهادات 69
منابع 71

 

 

 

فهرست جدول ها

جدول 1-1 منابع عمده آرسنیک در طبیعت 7
جدول 1-2 پایداری و برتری گونه‌های آرسنیک در دامنه‌های مختلف pH در محیط های آبی 11
جدول 1-3 درصد مواد تشکیل دهنده پامیس 21
جدول 3-1 متغیرهای مستقل و سطوح کد‌گذاری شده آن ها در طراحی ترکیبی مرکزی (CCD) برای حذف آرسنیک با استفاده از جاذب کلینوپتلولیت و پامیس 39
جدول 3-2 طراحی آزمایش با 13 تیمار برای کلینوپتیلولیت و 13 تیمار برای پامیس 40
جدول 3-3 طراحی آزمایشات مربوط به عوامل کد‌گذاری شده و و پاسخ های پیش بینی شده توسط نرم افزار در حضور کلینوپتیلولیت 44
جدول 3-4 طراحی آزمایشات مربوط به عوامل کد‌گذاری شده و و پاسخ های پیش بینی شده توسط نرم افزار در حضور پامیس 45
جدول 4-1مقایسه اولیه کارایی جذب و درصد جذب در جاذب های پومیس و زئولیت با و بدون آماده سازی 47
جدول 4-2 اطلاعات به‌ دست آمده از آزمایش سمیت آرسنیک بر روی ماهی کپور معمولی 48
جدول 4-3 اطلاعات به‌ دست آمده از آزمایش سمیت آرسنیک بر روی ماهی کپور معمولی 48
جدول 4-4 نتایج LC50 آرسنات سدیم برای کپور معمولی با استفاده از نرم افزار پروبیت 495 جدول4-5 نتایج طراحی ترکیبی مرکزی (CCD) برای تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی و آمونیاک آب در مدت 21 روز با استفاده از جاذب کلینوپتیلولیت 50
جدول4-6 نتایج طراحی ترکیبی مرکزی (CCD) برای تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی و آمونیاک در مدت 21 روز با استفاده از پامیس 51
جدول 4-7 نتایج آنالیز واریانس مدل درجه دوم سطح پاسخ برای پاسخ تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی در حضور جاذب کلینوپتیلولیت 52
جدول 4-8 نتایج آنالیز واریانس مدل درجه دوم سطح پاسخ برای پاسخ حذف آمونیاک در حضور جاذب کلینوپتیلولیت 52
جدول 4-9 نتایج آنالیز واریانس مدل درجه دوم سطح پاسخ برای پاسخ تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی در حضور پامیس 53
جدول 4-10 نتایج آنالیز واریانس مدل درجه دوم سطح پاسخ برای پاسخ حذف آمونیاک در حضور جاذب پامیس 53

 

 

فهرست شکل ها

شکل 1-1 دیاگرام Eh-pH گونه‌های آبی آرسنیک در سیستم As-O2-H2O درĊ25 و فشار یک اتمسفر 11
شکل 1-2 تبدیل غذا به نیتروژن در استخر ماهی 14
شکل 1-3 تصویری شماتیک از ساختاز زئولیت 19
شکل 3-1مخزن نگهداری ماهی
شکل 3-2 منحنی کالیبراسیون اندازه گیری آرسنیک توسط دستگاه جذب اتمی 37
شکل 3-3 آماده سازی آکواریوم ها
شکل 3-4 جدا کردن عضله ماهی
شکل 3-5 خشک شدن نمونه‌ها در دستگاه فریزدرایر 41
شکل 3-6 بافت عضله ماهی بعد از خارج کردن از فریزدرایر و خشک شدن 42
شکل 3-7 هضم اسیدی نمونه‌ها در دستگاه‌هاضم 42
شکل 3-8 منحنی کالیبراسیون اندازه گیری آرسنیک توسط دستگاه جذب اتمی 43
شکل 4-1 میزان درصد مرگ ومیر ماهی کپور معمولی در تست تعین غلظت کشندگی حاد (LC50-96h) در غلظت های مختلف آرسنیک 49
شکل 4-2 نمودار همبستگی مقادیر واقعی و پیش بینی شده برای: الف( تجمع آرسنیک (mg/kg) در 21 روز، ب) آمونیاک (mg/L) در 21 روز در حضور جاذب کلینوپتیلولیت 54
شکل 4-3 نمودار همبستگی مقادیر واقعی و پیش بینی شده برای: الف( تجمع آرسنیک (mg/kg) در 21 روز، ب) آمونیاک (mg/L) در 21 روز در حضور جاذب پامیس 54
شکل 4-4 نمودار سه بعدی جهت بررسی اثر متقابل: الف و ب) غلظت آرسنیک و دوز جاذب کلینوپتیلولیت بر تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی در 21 روز ، پ و ت) غلظت آرسنیک و دوز جاذب کلینوپتیلولیت بر آمونیاک آب در روز 21 55
شکل 4-5 نمودار سه بعدی جهت بررسی اثر متقابل: الف و ب) غلظت آرسنیک و دوز جاذب پامیس بر تجمع آرسنیک در بافت عضله ماهی در 21 روز ، پ و ت) غلظت آرسنیک و دوز جاذب پامیس بر آمونیاک آب در روز 21 56
شکل 4-6 شرایط مطلوب برای بهینه سازی عددی غلظت آرسنیک، کلینوپتیلولیت، تجمع آرسنیک در 21 روز و آمونیاک آب 57
شکل 4-7 شرایط مطلوب برای بهینه سازی عددی غلظت آرسنیک، پامیس، تجمع آرسنیک در 21 روز و آمونیاک آب 58

 

 

فصل اول

مقدمه و کلیات

1-1- مقدمه

پرورش ماهی وابسته به آب است و آبی که برای پرورش استفاده می شود بسته به نوع پرورش (ماهیان تجاری، ماهیان زینتی و غیره) از آب های جاری یا آب های ساکن و غیره تأمین می شود. این آب ها ممکن است حامل بعضی آلودگی ها باشند و آلودگی منابع آبی به عنوان پذیرنده نهایی آلاینده‌ها یکی از مهم‌ترین دغدغه‌ها است. مواد شیمیایی استفاده شده در صنعت و کشاورزی در نهایت به اکوسیستم های آبی منتقل می شوند و به یک مشکل جهانی تبدیل شده است (Sweet و Zelikoff، 2001؛ Ghosh و همکاران، 2006). ماهیان نسبت به آلودگی ها (فلزات سنگین ) و عوامل محیط آبی که در آن زیست می کنند نظیر: آمونیاک، pH، سختی، اکسیژن محلول و دیگر عوامل بیوشیمیایی و بیولوژیکی بسیار حساس است و ضرورت دارد که این عوامل در یک حد مشخص و معمولی ثابت بماند. در میان آلاینده‌های مختلف موجود در منابع آبی فلزات سنگین به دلیل سمیت بالا، فراوانی، ماندگاری بالا در محیط و هم‌چنین تجمع در موجودات زنده از اهمیت بیش‌تری برخوردار هستند (Varol و Sen، 2012).
1-2- ماهی کپور معمولی
کپور معمولی بومی آسیا است و امروزه در تمام نقاط دنیا از جمله اروپا، آسیا، آفریقا، شمال و جنوب آمریکا و استرالیا یافت می شود (Jester، 1974). محدودیت در پراکنش و پرورش این گونه در خطوط دمایی 18 درجه سانتی گراد ظاهر می شود (Keleher، 1956). ماهی کپور در طبیعت در مناطق میانی و یا پایین دست رودخانه یا مرداب که آب به آرامی جریان دارد، زندگی می کند. زیستگاه این ماهیان بستري گل آلود با پوشش علف هاي هرز است. معمولاً نرها با رشد سریع در سن یک سالگی به بلوغ می رسند و ماده ها به طور معمول بین 5-3 سالگی بالغ می-شوند (Carlander، 1969). حداکثر وزن کپور معمولی بالغ 4/37 کیلوگرم در جنوب آفریقا (Sigler و Miller، 1963) و 1/42 کیلوگرم در شمال آمریکا (Jester، 1974) گزارش شده است. بچه ماهی نورس کپور به طور اختصاصی از زئوپلانکتون تغذیه می کند (Alikunhi، 1958؛ Filatov، 1972؛ Persons، 1979) که نمونه بارز آن پاروپایان و روتیفرا است. هم چنین در صورت تراکم زئوپلانکتون، از فیتوپلانکتون نیز تغذیه می کند (Alikunhi، 1958؛ Panov و همکاران، 1973؛ Vaas و Vaas-van، 1959). هنگامی که در حال رشد باشند کف زي بوده و از موجودات و مواد بستر، مثل کر م ها و لارو حشرات آبزي به موازات گیاهان سبز مثل دانه ها و جلبک ها و دتریتوس ها تغذیه می کنند (Vaas و Vaas-van، 1959). ماهیان بالغ کپور معمولی از نوع تغذیه کننده هاي فرصت طلب هستند که قادراند از هر منبع غذایی قابل دسترس استفاده کرده و آن را جذب و هضم نمایند. کپورماهیان از زمان هاي بسیار قدیم پرورش داده می شدند و بدون شک امروزه آن ها یکی از مهم ترین انواع گونه هاي پرورشی از خانواده ماهیان استخوانی با فلس کروي شکل و با تولیدي بالغ بر 13 میلیون تن در سال هستند و بعد از کپور نقره اي و علف خوار مطرح می باشند (Webster و Lim، 2002). پرورش ماهی کپور معمولی از 1400 سال پیش از میلاد مسیح در کشور چین آغاز شد و در ایران نیز در اکثر استان های کشور این ماهی پرورش داده می شود. مناسب ترین دما برای تخم ریزی و رشد و نمو آن به ترتیب 20-18 و 25 درجه ساتنی گراد است (ستاری و همکاران، 1382). در بین ماهیان پرورشی، این ماهی از سهولت زیادی جهت پرورش برخوردار است و در مقابل تنگناهای محیطی، مقاومت بیشتری نسبت به سایر ماهیان دارد و با وجودی که یک ماهی آب شیرین است، ولی می تواند در آب های لب شور نیز زندگی کند (وثوقی و مستجیر، 1388). با توجه به امکان وقوع مسمومیت های مزمن و تحت کشنده در استخرهای پرورش کپورماهیان، بویژه گونه کپور معمولی که از مهم ترین گونه های سیستم پرورش گرم آبی در ایران می باشد و در نظر گرفتن خصوصیات بیولوژیک این گونه پرورشی همچون مقاومت نسبت به تغییرات محیطی به عنوان گونه ی مناسبی برای ارزیابی در نظر گرفته شد.
1-3- فلزات سنگین
فلزات سنگين عناصری تجزیه ناپذیر و پایدار هستند که به عنوان يكي از گروه‌هاي اصلي آلاينده‌هاي محيط هاي آبي در اثر فرآيندهاي طبيعي (فرسايش سنگ‌هاي معادن، باد، ذرات غبار، فعاليت‌هاي آتشفشاني، رودخانه‌ها و آبهاي زيرزميني) و نيز به طور عمده در اثر فعاليت‌هاي انساني (پسماند تعداد زیادی از کارخانه‌های شیمیایی مانند:: کاغذسازی، پتروشیمی، کودسازی و پالایشگاه‌ها) به محيط هاي آبي راه مي يابند و می‌توانند زندگی انسان و سایر موجودات زنده را به خطر بیاندازند (Humtsoe و همکاران، 2007). این مواد به ‌دليل تأثيرات منفي مختلف بر آبزيان مانند: كاهش رشد، تغييرات رفتاري و ژنتيكي و نيز مرگ ومير، س‌می‌شناخته شده (اميني رنجبر و ستوده نيا، 1384) و هم‌چنين به سبب تمايل به تجمع در زنجيره غذايي و انتقال به مصرف کنندگان بعدی از جمله: انسان، موجب ايجاد نگراني در مصرف ماهي گرديده اند.
1-4- آرسنیک
آرسنیک از جمله: عناصر سنگین است که هیچ گونه نقشی در متابولیسم موجودات زنده ندارد و به عنوان یک عنصر س‌می‌در بدن موجودات زنده عمل می نماید .آرسنیک در میان مواد شیمیایی خطرناک که به صورت طبیعی یا در اثر فعالیت های انسانی وارد بوم‌سازگان های آبی شده اند، ماده مهمی‌ است (ATSDR، 2002؛ Oremland و Stolz، 2003؛ Ratnaike، 2006). آرسنیک در اثر فعالیت های طبیعی مانند: سنگ ها و خاک های حاوی آرسنیک و برخی منابع انسانی نظیر: معدن کاوی، فرآیند شیشه سازی و حشره کش ها (Jeong و همکاران، 2007) و تخلیه زباله‌های صنعتی (Chang و همکاران، 2007) به منابع آبی راه می یابند. آلودگی آرسنیک در ایالات متحده، چین، شیلی، بنگلادش، تایوان، مکزیک، آرژانتین، لهستان، نیوزلند، هند، کانادا، ژاپن (Tuttijarvi و همکاران، 2009) و ایران گزارش شده است. در ایران نیز استان هایی هم‌چون کردستان، آذربایجان شرقی و غربی، خراسان و سیستان و بلوچستان دارای منابع آبی آلوده به آرسنیک هستند (جهانگیری و همکاران، 1390).
1-4-1- تاریخچه و ویژگی کلی آرسنیک
پس از تورات ارسطو برای اولین بار از ماده ای به نام Sandaracha نام برده که بعدها نئوفراست آن را Arsenikon نامید، که از نظر ویژگی بسیار شبیه رآلگار یا در اصطلاح فارسی زرنیخ قرمز است. در قرن شانزدهم میلادی شخصی بنام Paracels از کشور سوئیس آرسنیک را جزء عناصر فلزی در نظر گرفت. زکریای رازی دانشمند ایرانی توانست آرسنیک را با آزمایش-های گوناگون به‌ دست آورد. ولی آن را جزء عناصر فلزی در نظر نگرفت و نام آن را جوهر زرنیخ نهاد و در کتاب مدخل؛ زرنیخ را به سه دسته زرد، سرخ و سبز و در کتاب سرالاسرار آن را به شش گونه تقسیم بندی کرده است (قربانی، 1374).
آرسنیک یک ماده کریستاله و در حالت عنصری خاکستری رنگ است. دارای عدد اتمی 23، وزن اتمی 92/74 گرم، دانسیته 727/5 گرم در سانتی مترمکعب، نقطه ذوب Ċ 817 است و نقطه تصعید آن Ċ 613 است (Woolson، 1975؛ NAS، 1977؛ NRCC، 1978؛ EPA، 1985). آرسنیک جزء شبه فلزات است و در گروه پنجم جدول تناوبی قرار دارد و برای فعالیت های زیستی مورد نیاز نیست و در غلظت های پایین نیز ساست (Elsagh و Rabani، 2010) و خواص فیزیکی و شیمیایی آن شبیه فسفر است. از نظر فیزیکی به نظر می رسد که آرسنیک جزء فلزات باشد، اما به دلیل ترکیب نشدن با اسیدهای اکسیژن دار و اکسیدهای آن که خاصیت اسیدی دارد، جزء شبه فلزات طبقه بندی می گردد و در طبیعت بندرت در حالت آزاد یافت می شود. این فلز در سراسر پوسته زمین اغلب به شکل سولفید آرسنیک یا آرسنات-های فلزی و آرسنیدها وجود دارد (WHO، 1996). آرسنيک داراي چهار ظرفيت ( 3- ، صفر ، 3+ ، 5+ ) است و به ندرت در آب در حالت عنصری (0) پیدا شده است و حالت 3- آن تنها در مقادیر بسیار کم پتانسیل اکسیداسیون-احیا (Eh) در آرسین ها و آرسنیدها (Lima و همکاران، 1984) و 2+ در رآلگارها (As4S4) یافت شده است.
1-4-2 – مصرف آرسنیک و کاربردهای آن
تولید جهانی سالیانه آرسنیک بین 75000 تا 100000 تن برآورد می شود که ایالات متحده با 21000 و سوئد با 44000 تن جز عمده تولیدکنندگان هستند (NAS،1977؛ EPA، 1980). تقریباً 97% آرسنیک ساخته شده در سطح دنیا در شکل نهایی تری-اکسیدآرسنیک (As2O3) ساخته شده و مابقی به صورت افزودنی در ساخت آلیاژهای ویژه سرب و مس استفاده می شود (NAS، 1977). سولفید زرد آرسنیک به عنوان یکی از اجزا رنگ ها در گذشته‌های دور و حتی قرن نوزدهم بوده است. از آرسنیک به عنوان آفت کش حشره کش، محافظت کننده چوب، جلبک کش، داروی ضد سفلیس و هم‌چنین برای درمان آمیبیازیس و به عنوان افزودنی های غذایی در بخش کشاورزی، دامداری و پزشکی استفاده شده است؛ در بخش الکترونیک از آن به عنوان سلولهای خورشیدی، کاربردهای نیمه رسانا و ساعت-های دیجیتال و در بخش صنعت و متالوژی از آن به عنوان آلیاژها، صفحات باتری، شیشه آلات، رنگ ها، صابون ها و سرامیک ها استفاده شده است (Azcus و همکاران، 1994). نویسندگان عقیده دارند که در عهد باستان آرسنیک حداقل به عنوان یک فلز مجزا ناشناخته بود و بیش‌تر آلیاژ مس- آرسنیک استفاده می شد. اولین کسی که از زرنیخ برای ساختن برخی داروها استفاده کرد، دستیدرین بود (قربانی، 1374). ترکیبات معدنی آرسنیک از سال 1860 تا 1940 که آفت کش های آلی از جمله: DDT به بازار آمدند، حشره کش غالب در کشاورزی بودند. بيش‌تر از 80 درصد از تري اکسيدآرسنيک در کشاورزي به عنوان حشره کش، علف هرز-کش، قارچ‌کش، جلبک کش، رنگرزي، محافظت بخش های غوطه ور کشتی، ريشه کن کردن کرم نواري در گوسفند و خوک استفاده مي‌شود (NAS، 1977).
1-4-3- مشکلات آرسنیک در جهان
غلظت آرسنیک در آب های زیرزمینی به طور معمول بسیار پایین است و در اغلب موارد زیر g/Lµ10 است و دامنه آن از 5/0 تا 5000 g/Lµ متغير است. غلظت های بالای آن در نواحی با آتشفشان های فعال، آب های ژئوترمال و خاک هایی با غلظت بالای سولفیدها (مانند: آرسنوپیریت) یافت می شود. آرسنیک هم‌چنین می تواند از طریق فعالیت های معدن کاوی وارد آب های زیرزمینی شود. غلظت بالای آرسنیک بیش از مقدار استاندارد پذیرفته شده برای آب آشامیدنی (g/Lµ10)، در کشورهای زیادی از قاره‌های مختلف دیده شده است. کشورهای دارای مشکل آرسنیک به تفکیک قاره شامل: قاره آسیا (بنگلادش، چین، تایوان، مغولستان، هند، ایران، میانمار، نپال، پاکستان، تایلند، ویتنام)، قاره آمریکا (آلاسکا، آرژانتین، شیلی، دومینکن، السالوادور، هندوراس، مکزیک، نیکاراگوئه، پرو، ایالات متحده آمریکا)، قاره اروپا (اتریش، فنلاند، فرانسه، آلمان، یونان، مجارستان، ایتالیا، رومانی، روسیه، صربستان، انگلیس)، قاره آفریقا (غنا، آفریقا جنوبی، زیمبابوه) و اقیانوسیه (استرالیا، زلاندلو) هستند (Petrisevski و Shamma، 2007).
1-4-4- منابع و فراوانی آرسنیک در محیط
منابع آرسنیک در محیط متفاوت است. این ماده یکی از عناصر کمیاب در پوسته زمین است که از لحاظ فراوانی دارای دارای رتبه 20 در پوسته زمین (5/1 تا 2 میلی گرم در کیلوگرم)، رتبه 14 در آب دریا، و رتبه 12 در بدن انسان است (Woolson, 1975). به طور کلی مواد معدنی، سنگ ها، رسوبات و خاک منابع آرسنیک را تشکیل می دهند (قربانی، 1374). غلظت آرسنیک 2/0 تا 15 میلی گرم در کیلوگرم در لیتوسفر، 005/0 تا 1/0 میکروگرم در مترمکعب در هوا، کم‌تر از 10 میکروگرم در لیتر در آب و کم‌تر از 15 میلی گرم در کیلوگرم در خاک است (Eisler، 1994). آرسنیک در منابع طبیعی از جمله: خاک، هوا و آب نسبتاً متداول بوده و در کالبد گیاهان و موجودات زنده نیز یافت می شود (Naqvi و همکاران، 1994).
الف) آرسنیک در هوا
اشکال معدنی و آلی آرسنیک در ذرات معلق و بخارات موجود در هوا وجود دارد. ثابت شده که هوای نواحی شهری و روستایی دارای تقریباً 20% متیل آرسنیک از آرسنیک کل است. غلظت آرسنیک هوا در نواحی غیر آلوده، در حدود µg/L 5-10 گزارش شده است. هوا بوسیله فرسایش خاک و سنگ و هم‌چنین صنایع دچار آلودگی می گردد. کارخانه‌های ذوب و ریخته-گری فلزات مخصوصا مس شایع ترین علت آلودگی هوا با آرسنیک هستند. در حقیقت تری اکسید آرسنیک، محصول نهایی ذوب سنگ در این کارخانه‌ها است (غفاری و همکاران، 1388). در نواحی شهری غلظت آرسنیک g/m3µ 18/0- 033/0 بوده و در مجاورت تأسیسات صنعتی به g/m3µ1 افزایش می یابد. بر اساس برآورد دانشمندان انباشت آرسنیک 1 تا g/m3µ1000 در سال بر حسب انباشت تر و خشک و نوع منابع آلودگی متفاوت است (Smedley، 2001). آرسنیک در نهایت به آب منتقل می شود.
ب) آرسنیک در خاک
آرسنیک به عنوان جزء عمده در بیش از 200 ماده معدنی (حداقل 245 گونه معدنی) به صورت آرسنیک عنصری، آرسنیدها، سولفیدها، اکسیدها، آرسنات ها و آرسنیت ها یافت می-شود. عموماً سطح آرسنیک خاک به طور معمول نزدیک مناطق معدنی حاوی طلا، نقره، سرب، روی، نیکل، فسفر، تنگستن، مولیبدن، کادمیوم و کبالت افزایش می یابد (قربانی، 1374). در جدول 1-2 فهرستی از رایج ترین مواد معدنی آرسنیک ارائه شده است. اغلب این مواد معدنی در محیط زیست طبیعی نادر بوده و بیش‌ترین غلظت آن ها در نواحی معدنی و در ارتباط نزدیک با فلزاتی مانند: P، Sb، Au، Ag، Pb، Cd و Mo یافت می شوند. آرسنوپیریت رایج ترین و فراوان ترین کانی معدنی آرسنیک است و همراه با دیگر مواد معدنی آرسنیک-گوگرد از جمله: زرنیخ قرمز و زرنیخ زرد تنها در شرایط دمایی بالا در پوسته زمین تشکیل می شوند (Smedley، 2001). شیمی آرسنیک به مقدار زیادی مشابه گوگرد است. آرسنیک در ساختمان کریستالی بسیاری از مواد معدنی سولفیدی به عنوان جایگزین گوگرد حضور دارند. پیریت یک حامل شناخته شده آرسنیک بوده و ممکن است تا mg/kg5600 آرسنیک داشته باشد. به عنوان مثال: در خاک های به‌ دست آمده از شیل پیریتی، آرسنیک کل 10 مرتبه از سطوح زمینه آن در خاک بالاتر بوده است (Eisler، 1994). غلظت آرسنیک در مواد معدنی فسفاته متغیر بوده اما در آپاتیت از mg/kg1000 گزارش شده است. در بسیاری از ساختارهای معدنی آرسنیک می تواند جایگزینی برای Si+4، Al+3، Fe+3 و Ti+4 باشد. اغلب مواد معدنی سیلیکاته حدود mg/kg 1 و کربنات ها معمولاً کم‌تر از mg/kg 1 و کربنات ها معمولاً کم‌تر از mg/kg 10 آرسنیک دارند (Smedley، 2001).

.

.

.

.

.

.

.

.

.

 

 

 

منابع

6-1: منابع فارسي

  • آب آشامیدنی. ویژگی­های فیزیکی و شیمیایی. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی، 1385.
  • اميني رنجبر، غ. ستوده نيا، ف. 1384. تجمع فلزات سنگين در بافت بافت عضله ماهی ماهي كفال طلايي (Mugil auratus) دریای خزر در ارتباط با برخي مشخصات بيومتريك (طول استاندارد، وزن، سن و جنسيت). مجله علمي شيلات ايران، سال چهاردهم، شماره 3 ، ص 18-1.
  • برقعی، س.م. شربت، م، ع. 1384. عملکرد پامیس به عنوان بستر ثابت بیوفیلم در راکتور بیوفیلمی هوازی. فصلنلمه آب و فاضلاب، شماره 56، ص 71-63.
  • جهانگیري، ش. سوري، ب. بدخشان، ه. 1390. رابطه خصوصیات مختلف فیزيكوشیمیائي برخي خاك‌هاي آهكي حوزه آبخیز قروه با آرسنیك خاك. مجله پژوهشهاي خاك )علوم خاك و آب)، ص 337-48.
  • ستاری، م. شاهسونی، د. شفیعی، ش. ماهی شناسی (2) سیستماتیک. نشر حق­شناس، ص 502.
  • قربانی، م. 1374. زمین­شناسی ایران: آنتیموان، آرسنیک، جیوه. سازمان زمین­شناسی کشور.
  • وثوقی، غ.ح. مستجیر، ب. 1388. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. ص 317.

6-2 منابع انگلیسی

  • Aksu, Z. and Gonen, F. 2006. Binary biosorption of phenol and chromium (VI) onto immobilized activated sludge in a packed bed: Prediction of kinetic parameters and breakthrough curves. Separation and Purification Technology. 49: 205-216.
  • Akter, M.S., Ahmed, K., Akhand, A.A. and Islam, M. 2008. Acute toxicity of arsenic and mercury to fresh water climbing perch, Anabas testudineus (Bloch). World Journal of Zoology. 3 (1): 13-18.
  • Alikunhi, K.H. 1958. Observations on the feeding habits of young carp fry Indian Journal of Fisheries. 5 (1): 95-106.
  • Allen-Gill, S.M. and Martynov, V.G. 1995. Heavy metals burdens in nine species of freshwater and anadromous fish from the Pechora River, Northern Russia. Sciences Total 160-161: 653-659.
  • Al-Yousuf, M.H., El-Shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M. 2000. Trace metals in liver, skin and muscle of Lethrinus lentjan fish species in relation to body length and sex. Journal of Scientific Total Environment. 256: 87-94.
  • Amend, D.F., Croy, T.R., Goven, B.A., Johnson, K.A. and McCarthy, D.H . Transportation of fish in closed systems: methods to control ammonia, carbon dioxide, pH, and bacterial growth. Transactions of the American Fisheries Society. 111: 603–611.
  • Anawar, H.M., Akai, J., Mostofa, K.M.G., Safiullah, S. and Tareq, S.M. 2002. Arsenic poisoning in groundwater: Health risk and geochemical sources in Bangladesh. Environment International. 27(7):597-604.
  • Armagan, B., Turan, M. and Selik, M. 2004. Equilibrium studies on the adsorption of reactive azo dyes into zeolite. Desalination. 170(1): 33-39.
  • Asghari moghadam, A., Gharedaashi, E., Montajami, S., Nekoubin, H., Salamroudi, M. and Jafariyan, H. 2012. Effect of Clinoptilolite Zeolite to Prevent Mortality of Beluga (Huso huso) by Total Ammonia Concentration. Global Veterinaria. 9 (1): 80-84.
  • Atkinson, A.C. and Donev, A.N. 1992. Optimum experimental design. Oxford University Press. 5:132-189
  • 2002. Interaction Profiles for Toxic Substances. Agency for Toxic Substances and Disease Registry. Atlanta, GA: Agency for Toxic Substances and Disease Registry.
  • Azcue, J.M. and Nriagu, J.O. 1994. Arsenic: historical perspectives. In: arsenic in the environment, part 1: Cycling and characterization. (Eds. J. O. Nriagu), Wiley knowledge for generation.
  • Bahri, E., Ali, S., Sedef, D. and Gencay S. 2010. Characterization of acidic pumice and determination of its electrokinetic properties in water. Powder Technology. 197 (1-2): 129-135.
  • Baldini, M., Danuso, F. and Turi, M. 2004. Evaluation of new clones of Jerusalem artichoke for inulin and sugar yield from stalks and tubers. Industrial Crops and Products. 19: 25–40.
  • Banik, R.M., Santhiagu, A. and Upadhyay, S.N. 2007. Optimization of nutrients for gellan gum production by Sphingomonas paucimobilis ATCC-31461 in molasses based medium using response surface methodology. Bioresource Technology. 98: 792-797.
  • Bassari, A., Akyuz, T. and Kurtcebe, T. 1996. The Removal of Th, Cs and Sr Ions from SolutionUsing Granulated Pumice Stone. Journal of Inclusion Phenomena and Macrocyclic Chemistry. Chem. 26: 83–88
  • Bergero, D., Boccignone, M., DiNatale, F., Forneris, G., Palmegiano, G.B., Roagna, L. and Sicuro, B. 1994. Ammonia removal capacity of European natural zeolite tuffs: application to aquaculture waste water. Aquaculture Research. 25: 813–821.
  • Bower, C.E. and Turner, D.T. 1982. Ammonia removal by clinoptilolite in the transport of ornamental freshwater fishes. The Progressive Fish-Culturist. 44: 19–23.
  • Box, G.E.P., Hunter, W.G., and Hunter, J.S. Statistics for Experimenters: An Introduction to Design, Data Analysis and Model Building, 1st ed., John Wiley and Sons, USA.
  • Box, G.E.P. and Wilson, K.B. 1951. On the Experimental Attainment of Optimum Conditions.Journal of the Royal Statistical Society: Series B (Statistical Methodology) . 13: 1–45.
  • Brix, K.V., Cardwell, R.D. and Adams, W.J. 2003. Chronic toxicity of arsenic to the Great Salt Lake brine shrimp, Artemia franciscana, Ecotoxicology and Environmental Safety. 54: 169 – 175.
  • Can, M.Y., Kaya, Y. and Algur, O.F. 2006. Response surface optimization of the removal of nickel from aqueous solution by cone biomass of Pinus sylvestris. Bioresource Technology. 97:1761-1765.
  • Canli, M. and Atli, G. 2003. The relationship between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Journal of Environmental Pollution. 121: 129-136.
  • Cao, J., Wu, Y., Jin, Y., Yilihan, P. and Huang, W. 2014. Response surface methodology approach for optimization of the removal of chromium (VI) by NH2-MCM-41. Journal of the Taiwan Institute of Chemical Engineers. 45: 860-868.
  • Carlander, K.D. 1969. Handbook of freshwater fishery biology. Iowa State University Press.752.
  • Castaldi, P., Santona, L., Enzo, S. and Melis, P. Sorption processes and XRD analysis of a natural zeolite exchanged with Pb2+, Cd2+ and Zn2+ cations. Journal of Hazardous Materials. 156(1-3):428-434.
  • Chang, Y.Y., Song, K.H. and Yang, J.K. 2007. Removal of As (III) in a column reactor packed with iron- coated sand and manganese- coated sand. Journal of Hazardous Materials. 1-8.
  • Cogun, H.Y. and Sahin, S. 2013. The Effect of Lead and Zeolite on Hematological and Some Biochemical Parameters in Nile Fish (Oreochromis niloticus). Curr, Prog, Biolog, Res. 277-286.
  • Colt, J. 2006. Water quality requirements for reuse systems. Aquacultural Engineering. 34: 143-156.
  • Danabas, D. and Altun, T. 2011. Effects of zeolite (Clinoptilolite) on some water and growth parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss WALBAUM, 1792). Digest journal of nanomaterials and biostructures. 6 (3): 1111-1116.
  • Doula, M. K. 2006. Removal of Mn2+ ions from drinking water by using clinoptilolite and a clinoptilolite- Fe oxide system. Water Research. 40 (17): 3167-3176.
  • Doula, M. and Dimirkou, A. 2008. Use of an ironover exchanged clinoptilolite for the removal of Cu2 ions from heavily contaminated drinking water samples. Journal Hazard Material. (151): 738-745.
  • Elsagh, A. and Rabani, M. 2010. Determination of heavy metals in salt from filtration with water washing method and comparing with standard. 2nd Iranian Congress for Trace Elements. p: 5.
  • Elsagh, A. and Rabani, M. 2010. Determination of heavy metals like Ni, Cr, Mn and Co in salt that getting from infiltration with water washing method and comparing with impure salt. The National Chemistry Conference, Islamic Azad University, Shahreza 373.
  • 1980. Ambient water quality criteria for lead. EPA Report, 440/5/80-057.
  • 1980. Ambient water quality criteria for arsenic. U.S. Environ. Protection Agency Rep. 440/5-80-021. 205.
  • 1985. Ambient water quality criteria for arsenic. U.S. Environ. Protection Agency Rep. 440/5-84-033. 66.
  • Eisler, R. 1988. A review of Arsenic hazards to fish, wildlife, and invertebrates. Contaminant Hazard. Biological Report 85(1.12).
  • Eisler, R. 1994. A review of arsenic hazards to plants and animals with emphasis on fishery and wildlife resources. In: Jerome O. Nriagu, ed. Arsenic in Environmen. 185–259.
  • Emadi, H., Nezhad, J. E. and Pourbagher, H. 2001. In vitro Comparison of Zeolite (Clinoptilolite) and Activated Carbon as Ammonia Absorbants in Fish Culture. Naga- The ICLARM Quarterly. 24: 18-20.
  • Erdem, E., Karapinar, N. and Donat, R. 2004. The removal of heavy metal cations by natural zeolites. Journal of Colloid and Interface Science. 2: 309-314.
  • Ersoy, B., Sariisik, A., Dikmen, S., Sariisik, G. 2010. Characterization of acidic pumice and determination of its electro kinetic properties in water. Powder Technology. 197: 129–135.
  • Fan, W., Ren, J., Li, X., Wei, C., Xue, F. and Zhang, N. 2015. Bioaccumulation and oxidative stress in Daphnia magna exposed to arsenite and arsenate. Environmental Toxicology and Chemistry. 34(11):2629-35.
  • Farhangi, M., Gholipour Kanani, H. and Kashani, M. 2014. Prevention of acute ammonia toxicity in beluga, Huso huso, using natural zeolite. Caspian Journal of Environmental Sciences. 12(2): 267-276.
  • Farhangi, M. and Rostami-Charati, F. 2012. Increasing of survival rate to Acipenser persicus by added Clinoptilolite zeolite in acute toxicity test of ammonia.  Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation. 5(1): 18-22.
  • Fenglian, F. and Wang, Q. 2011. Removal of heavy metal ions from wastewaters: A review. Journal of Environmental Management. 92: 407-418.
  • Filatov, V.L. 1972. Effectiveness of the utilization of natural foods bycarp (Cyprinus carpio L.) larvae. Journal of Ichthyology. 12 (5): 812-818.
  • Finney, D.J.1942. The analysts of toxicity tests on mixtures of poisons. Annals of Applied Biology. 29: 82-94.
  • Gautam, A.K. and Lall, S.B. 1989. Toxicity of zinc sulphate to Channa punctatus (BL). Symplicity Processing Environmental toxicology. 377-380.
  • Ghasemi, H., Kazemian, H., Malekinejad, and Pakzad, M. 2005. Survay of synthesized zeolites from Clinoptilolite A and P on heavy cations removal from sentetic wastewater. Iranian Journal of Chemistry and Chemical Engineering (IJCCE). (2): 51-61.
  • Ghasemi, Z., Sourinejad, I., Kazemian, H. and Rohani, S. 2016. Application of zeolites in aquaculture industry: a review. Reviews in Aquaculture. 1-21.
  • Ghiasi, F. and Jasour, M.S. 2012. The Effects of Natural Zeolite (Clinoptilolte) on Water Quality, Growth Performance and Nutritional Parameters of fresh water aquarium fish, Angel (Pterophyllum scalare). International Journal of Fisheries and Aquaculture. 2(3): 22-25.
  • Ghiasi, F. and Mirzargar, S.S. 2015. Pathological effects of cadmium and efficiency of natural zeolite, Clinoptilolite, to reduce the cadmium toxicity in common carp and its ability to remove Cadmium from contaminated water. Research Journal for Veterinary Practitioners. 3(2): 36-40.
  • Ghiasi, F., Mirzargar, S.S., Badakhshan, H. and Amoli, J.S. 2011. Influence of Iranian natural zeolite on accumulation of cadmium in cyprinuscarpio tissues following exposure to low concentration of cadmium. Asian Journal of Animal and Veterinary Advances. 6(6): 636-641.
  • Ghobadi, M., Yuzbashi, A.A. and Kashani Motlagh, 2008. Study on structural changes occurred during the acid activation of Gharenaz bentonite as bleaching earth. Iranian Journal of Crystallography and Mineralogy. 16(1): 13-20.
  • Ghorbani, F., Younesi, H., Ghasempouri, S. M., Zinatizadeh, A. A., Amini, M. & Daneshi, A. (2008) Application of response surface methodology for optimization of cadmium biosorption in an aqueous solution by Saccharomyces cerevisiae.
  • Ghosh, D., Bhattacharya, S. and Mazumder, S. 2006. Perturbations in the catfish immune responses by arsenic: organ and cell specific effects. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology. 143: 455–463.
  • Ghosh, D., Bhattacharya, S. and Mazumder, S. 2006. Perturbations in the catfish immune responses by arsenic: organ and cell specific effects. Comparative biochemistry and physiology – part c toxicology & pharmacology. 143: 455–463.
  • Gode, F. and Moral, E. 2008. Column study on the adsorption of Cr (III) and Cr (VI) using Pumice, Yarıkkaya brown coal, Chelex-100 and Lewatit MP 62. Bioresource Technology. 99: 1981–1991.
  • A., Nemirovsky, A., Zilberg, D., Khaimov, A., Brenner, A., Snir, E., Ronen, Z. and Nejidat, A. 2003. Soil nitrifying enrichments as biofilter starters in intensive recirculating saline water aquaculture. Aquaculture. 223 (1–4): 51–62.
  • Heidari, M., Moattar, F., Naseri, S., Samadi M.T. and Khorasani, N. Evaluation of aluminum-coated pumice as a potential arsenic (V) adsorbent from water resources. International Journal of Environmental Research. 5(2):447-456.
  • Huang, Y. K., Lin, K. H., Chen, H. W., Chang, C. C., Liu, C. W., Yang, M. H. and Hsueh, Y.M. Arsenic species contents at aquaculture farm and in farmed mouthbreeder (Oreochromis mossambicus) in Blackfoot disease hyperendemic areas. Food and Chemical Toxicology. 41(11): 1491–1500.
  • Huang, H., Xiao, X., Yan, B. and Yang, L. 2010. Ammonium removal from aqueous solutions by using natural Chinese (Chende) zeolite as adsorbentJournal of Hazardous Materials. 175: 247–252.
  • Huisman, J.L., Schouten, G. and Schultz, C. 2006. Biologically produced sulphide for purification of process streams, effluent treatment and recovery of metals in the metal and mining industry. Hydrometallurgy 83: 106-
  • Huguenin, J.E. and Colt, J. 1989. Design and Operating Guide for Aquaculture Seawater Systems. Amsterdam: 264.
  • Humtsoe N., Davoodi R., Kulkarni B.G. and Chavan B. 2007. Effect of arsenic on the enzymes of the rohu carp, Labio rohita. The Raffles Bulletin of Zoology. 14:17-19.
  • Jain, S.K. 1999. Protective role of zeolite on short- and long-term lead toxicity in the teleost fish Heteropneustes fossilis. 39(2): 247-251.
  • James, R. Effect of zeolite on reduction of cadmium level in water and improvement of haematological parameters in Oreochromis mossambicus (Peters). Indian Journal of Fisheries. 47(1): 29-35.
  • James, R. and Sampath, K. 1999. Effect of zeolite on the reduction of cadmium toxicity in water and a freshwater fish, Orechromis mossambicus. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 62: 222-229.
  • James, R. and Sampath, K. 2003. Removal of Copper Toxicity by Zeolite in Java Tilapia Oreochromis mossambicus (Peters). Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 71:1184–1191.
  • James, R., Sampath, K. and Selvamani, P. 2000. Effect of Ion-Exchanging Agent, Zeolite on Removal of Copper in Water and Improvement of Growth in Oreochromis mossambicus (Peters). Asian Fisheries Science 13: 317-325.
  • Jeong, Y., Fan, M., Singh, S., Chuang, C., Saha, B. and Leeuwen, J.H.V. 2007. Evaluation of iron oxide and aluminum oxide as potential arsenic (V) adsorbents. Chemical Engineering and Processing, 46: 1030–1039.
  • Jeong, Y., Fan, M., Singh, S., Chuang, C., Saha, B. and Leeuwen, J.H.V. 2007. Evaluation of iron oxide and aluminum oxide as potential arsenic (V) adsorbents. Chemical Engineering and Processing, 46: 1030–1039.
  • Jester, D.B. 1974. Life history, ecology and management of the carp Cyprinus carpio Linnaeus, in Elephant Butte Lake. New Mexico State Univ. Ag. Exp. Sta. Res. Rep. 273.
  • Jiantuan, G., Jiuhui, Q., Pengju, l. 2004. New bipolar electrocoagulation – electroflotation process for treatment of laundry waste water. Separation and purify ication technology. 36:33-39.
  • Johnstone, R. and Heijnen, H. 2001. Safe Water Technology for Arsenic Removal. Technologies for arsenic Removal from Drinking Water.
  • Kaiser, H., Brill, G., Cahill, J., Collett, P., Czypionka, K. and Green, A. Testing clove oil as an anaesthetic for long-distance transport of live fish: the case of the Lake Victoria cichlid Haplochromis obliquidens. Journal of Applied Ichthyology. 22: 510– 514.
  • Kang, S.Y., Lee, J.U., Moon, S.H. and Kim, K.W. 2004. Competitive adsorption characteristics of Co2+, Ni2+, and Cr3+ by IRN-77 cation exchange resin in synthesized Chemosphere. 56: 141-147.
  • Kanyılmaz, M., Kocer, M.A.T., Sevgili, H., Pak, F. and Aydın, I. 2014a. Use of natural zeolite for ammonia removal during a simulated live juvenile sea bass (Dicentrarchus labrax) transportation.The Israeli Journal of Aquaculture – Bamidgeh. 66: 1–5.
  • Kartinen, E.O. and Martin, C.J. 1995. An overview of arsenic removal processes. Desalination. 103 (1-2): 78-88.
  • Kavitha, C., Malarvizhi, A., Senthil Kumaran, S. and Ramesh, M. 2010. Toxicological effects of arsenate exposure on hematological, biochemical and liver transaminases activity in an Indian major carp, Catla catla. Food and Chemical Toxicology. 48(10):2848-2854.
  • Keleher, J.J. 1956. The northern limits of distribution in Manitoba for cyprinid fishes. Canadian Journal of Zoology. 34 (4): 262-266.
  • Khattar, J.I.S. and Shailza. 2009. Optimization of Cd2+ Removal by the Cyanobacterium Synechocystis Pevalekii Using the Response Surface Methodology, Process Biochemistry. 44: 118–121.
  • Kitis, M., Karakaya, E., Nevzat, O.Y., Civelekoglu, G. and Akcil, A. 2005. Heterogeneous catalytic degradation of cyanide using copper-impregnated pumice and hydrogen Water Research. 39(8): 1652- 1662.
  • Kitis, M., Kaplan, S.S. Karakaya, E., Yigit, N.O. and Civelekoglu, G. 2007. Adsorption of natural organic matter from waters by iron coated pumice. Chemosphere. 66 (1): 130-138.
  • Koksoy, O. and Doganaksoy, N. 2003.Joint optimization of mean and standard deviation using response surface methods. J ournal of Quality Technology. 35: 239–252.
  • Kovendan, K., Vincent, S., Janarthanan, S. and Saravanan, M. 2013. Expression of metallothionein in liver and kidney of freshwater fish Cyprinus carpio communis (Linn) exposed to arsenic trioxide.American Journal of Scientific and Industrial Research.1-10.
  • Ku, Y. and Jung, I.L. 2001. Photocatalytic reduction of Cr(VI) in aqueous solutions by UV irradiation with the presence of titanium dioxide. Water Research Journal. 35:135-142.
  • Lemarie, G., Dosdat, A., Coves, D., Dutto, G., Gasset, E. and Ruyet, J.P.G .2004. Effect of chronic ammonia exposure on growth of European seabass (Dicentrarchus labrax) juveniles. Aquaculture. 229: 479-491.
  • Lima, A.R., Curtis, C., Hammermeister, D.E., Markee, T.P., Northcott, C.E. and Brooke, L.T. 1984. Acute and chronic toxicities of arsenic (III) to fathead minnows, flagfish, daphnids, and an amphipod. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. 13: 595-601.
  • Lin, S.H. and Peng, C.F. 1994. Treatment of textile Wastewater by electrochemical Method. Water Research. 28(2): 277-282.
  • Linde, A. R., Sanchez-Galan, S., Izquierdo, J.I., Arribas, P., Maranon, E., Garcy, A. and Vazquez, E. 1998. Brown Trout as biomonitor of heavy metal pollution: effect of age on the reliability of the assessmentEcotoxicology and Environmental Safety. 40: 120–125.
  • Little, T.M and Hills F.J. Agricultural experimentation: Design and analysis. John wiley and sons, New York. 350.
  • Maeda, S., Inoue, R., Kozono, T., Tokuda, T., Ohki, A and Takeshita, T. 1990. Arsenic metabolism in a freshwater food chain. Chemosphere. 20: 101.
  • Mandal, B. K. and Suzuki, K. T. 2002. “Arsenic round the world: a review “, Talanta, 58: 201-235.
  • Mehmet, K., Emine, K., Nevzat O. Y., Gokhan C. and Ata A.2005. Heterogeneous catalytic degradation of cyanide using copper-impregnated pumice and hydrogen peroxide. Water Research. 39: 1652-1662.
  • Mollah, M.Y.A., Schennach, R., Parga, J.R. and Cocke, D.L. 2001. Electro coagulation (EC) – science and applications. Journal of Hazardous Materials.  84: 29 – 41.
  • Montgomery, J.M. 1985. Water treatment principles and design. New York: Johns Wiley & Sons.
  • Moradi, M., Rezaei Kalantary, R., Khosravi, T., Sharafi, H. and Sharafi, K. 2015. Equilibrium Isotherms and Kinetic Studies of Lead Removal from Aqueous Solution by Pumice Powder. Technical Journal of Engineering and Applied Sciences (TJEAS). 5(1): 69-79.
  • Motsi, T., Rowson, N. and Simmons, A. Adsorption of heavy metals from acid mine drainage by natural zeolite”. International Journal of Mineral Processing. (92) 42-48.
  • Myers, R.H and Montgomery, D.C. 1995. Response Surface Methodology: process and product optimization using designed experiment. John Wiley and Sons.
  • Myers, R.H. and Montgomery, D.C. 2002. Response surface methodology: process and product optimization using designed experiments. Wiley Pub Inc, New York. 51-83.
  • Nagymajtényi, L., Selypes, A. and Berencsi, G. 1985. Chromosomal aberrations and foetotoxic effects of atmospheric arsenic exposure in mice. Journal of Applied Toxicology. 5(2):61-63.
  • 1977. Arsenic. National Academy of Sciences. Washington, D.C. 332.
  • Naqvi, S.M., Vaishnavi, C. and Singh, H. 1994. Toxicity and metabolism of arsenic in vertebrates. In: Arsenic in the Environment, Part II: Human health and ecosystem effects. (Eds. J. O. Nriagu), Wiley knowledge for generation.
  • Newman, M.C. and Unger, M.A. 2003. Fundamentals of ecotoxicology. CRC Press. 458.
  • Noori Sepehr, M., Zarrabia, M., Kazemian, H., Amrane, A., Yaghmaian, K. and Ghaffari, H. R. 2013. Removal of hardness agents, calcium and magnesium, by natural and alkaline modified pumice stones in single and binary systems. Applied Surface Science. 274: 295– 305.
  • Norwood, W.P., U. Borgmann and D.G. Dixon. 2007. Chronic toxicity of arsenic, cobalt, chromium and manganese to Hyalella azteca in relation to exposure and bioaccumulation. Environmental Pollution. 147: 262-272.
  • 2001. Arsenic in Drinking Water. Washington DC: National Acadamy Press.225.
  • 1978. Effects of arsenic in the Canadian environment. National Research Council of Canada Publications. No. NRCC 15391. 349.
  • Nurdan, K., Pazarlioglu, I. and Azmi, T. 2005. Biodegradation of phenol by Pseudomonas putida immobilized onactivated pumice particles. Process Biochemistry. 40: 1807-1814.
  • 1984. Guideline for testing of chemicals, section2, Effect on biotic system. 1-39.
  • 1992. Guideline for testing of chemicals, Adopted by the Council on 17th July 1992. Fish, Acute Toxicity Test. 203:1-9.
  • Ostroski, I., Barros, M., Silvab, E., Dantas, J., Arroyo, P. and Lima O. 2009. A comparative study for the ion exchange of Fe(III) and Zn(II) on zeolite NaY. Journal of Hazardous Materials. (161): 1404-1412.
  • Oremland, R.S. and Stolz, J.F. 2003. The ecology of arsenic. Science. 300: 939–944.
  • ozer, A., Gurbuz, G., alimli, A.C. and Korbahti, B.K. 2009. Biosorption of Copper (II) Ions on Enteromorpha Prolifera: Application of Response Surface Methodology (RSM). Chemical Engineering Journal. 146: 377–387.
  • Oz, M., Sahin, D. and Aral, O. 2010. Using of the natural zeolite clinoptilolite in transportation of fingerling trout (Oncorynchus mykiss, W. 1792). Journal of Fisheries Sciencescom 4: 264–268.
  • Oztel, M.D. and Akbal, F. 2015. Arsenite removal by adsorption onto iron oxide coated pumice and sepiolite. Environmental Earth Sciences 73:4461–4471.
  • Persons, W.R. 1979. The use of open and closed backwater ponds of the Missouri River, Iowa as spawning and nursery areas for fish. M.Sc. Thesis Iowa State University. Ames. 115.
  • Petrisevski, B. and S. Shamma. 2007. Arsenic in drinking water. Who collaboration center.
  • F. W. 1994. Crafting a new arsenic rule. Journal of American Water Works Association. 86 (9): 6-10.
  • Qin, C., Wang, R. and Ma, W. 2010. Characteristics of calcium adsorption by Ca-Selectivity zeolite in fixed-pH and in a range of pH. Chemical Engineering Journal 156: 540–545.
  • Ramırez-Duarte, W.F., Pineda-Quiroga, C., Martınez, N. and Eslava- Mocha, P.R. 2011. Use of sodium chloride and zeolite during shipment of Ancistrus triradiatus under high temperature. Neotropical Ichthyology. 9: 909–914.
  • Rand, G and Petrocelli, S.R (1985). Fundamentals of aquatic toxicology, methods and applications, Hemsiphere, New York, pp 1-28.
  • Ratnaike, R.N. 2006. Acute and chronic arsenic toxicity. Postgraduate Medical Journal. 79: 391–
  • Sharbatmaleki, M. A. and Borghei, S. M. 2005. Performance of Pumice stone as a packing in fixed-bed aerobic bioreactor journal of water and wastewater. 56: 62-71.
  • Sigler, W.F. and Miller, R.R. 1963. Fishes of Utah. Utah – US Department of State. Fish Game, Salt Lake City. 203.
  • Silapajarn, O., Silapajarn, K. and Boyd, C.E. 2006. Evaluation of zeolite products used for aquaculture in Thailand. Journal of the World Aquaculture Society. 37: 136-138.
  • Singh, R.K., Vartak, V.R., Balange, A.K. and Ghughuskar, M.M. 2004. Water quality management during transportation of fry of Indian major carps, Catla catla (Hamilton), Labeo rohita (Hamilton) and Cirrhinus mrigala (Hamilton). Aquaculture. 235: 297–302.
  • Smart, G.R. 1981. Aspects of water quality producing stress in intensive fish culture. In: Pickering, A.D. (Ed), Stress and fish, Academic press, London. 276-293.
  • Smedley, P. L. and Kinniburgh, D. G.2001. Source and behavior of arsenic in natural waters, Chapter 1 in: United Nations Synthesis Report on Arsenic in Drinking Water, British Geological Survey, Wallingford, Oxon OX10 8BB, UK.
  • Soleimani, M., Ansarie, A., Haj Abassie, M.A. and Abedie, J. 2008. Investigation of nitrate and ammounium removal from groundwater by mineral filters. Journal of Water and Wastewater. 67: 18-20.
  • Suhendrayatna Ohki, A., Nakajima, T. and Maeda, S. 2002. Chemosphere. 46 (2): 319-324.Maiti, S.K. 2003. Handbook of Methods in Environmental Studies Vol. 2: Air, Noise, Soil and Overburden Analysis. ABD Publishers, Jaipur.
  • Sweet, L.I. and Zelikoff, J.T. 2001. Toxicology and immunotoxicology of mercury: a comparative review in fish and humans. Journal of toxicology and environmental health. Part B, Critical 4: 161–205.
  • Taheri, A., Abedian Kenari, A.M., Motamedzadegan, A. and Habibi Rezaei, M., 2012. Process optimization of Poultry By products hydrolysate production by RSM. Iranian Journal of Food Science and Technology. 34: 65-76.
  • Tuttijarvi, T., Lub, J., Sillanpaa, M. and Chen, G. 2009. As(V) adsorption on maghemite nanoparticles. Journal of Hazardous Materials. 166(2-3): 1415-1420.
  • Vaas, K.F. and Vaas-van Oven. A. 1959. Studies on the production and utilization of natural food in Indonesian carp ponds. Hydrobiologia. 12: 308-392.
  • Vasylechko, V.O., Gryshchouk, G.V., Kuzma, Y.B., Zakordonskiy, V.P., Vasylechko, L.O. and Lebedynets, O. Adsorption of cadmium on acidmodified Transcarpathian clinoptilolite. Microporous and Mesoporous Materials. 2003. 60: 1-3. EX1- EX2, 1-302.
  • Varol, M. and Sen, B. 2012. Assessment of nutrient and heavy metal contamination in surface water and sediments of the upper Tigris River. Turkey, CATENA. 92(0):1-10.
  • Veliev, E.V., Öztürk, T., Veli, S. and Fatullayev, A.G. Application of Diffusion Model for Adsorption of Azo Reactive Dye on Pumice. Polish Journal of Environmental Studies. 15(2): 347-353.
  • Visoottiviseth, P., Francesconi, K. and Sridokchan, W. 2002. The potential of Thai indigenous plant species for the phytoremediation of arsenic contaminated land. Environmental Pollution 118: 453–461.
  • Wang, Y. and Walsh, P. 1999. High ammonia tolerance in fishes of the family Batrachoididae (Toadfish and Midshipmen). 205-219.
  • Wang, Y.C., Chaung, R.H. and Tung, L.C. 2004. Comparison of the cytotoxicity induced by different exposure to sodium arsenite in two fish cell lines. Aquatic Toxicology. 69: 67-79.
  • Webster, C.D. and Lim, C.E., 2002. Nutrient Requirments and Feeding of Finfish for Aquaculture. CABI. 418
  • World Health Organization. 1996. “Guidelines for drinking water quality”, 2nd Ed., 2: 156-167.
  • Wiesmann, U. 1994. Biological nitrogen removal from Advances in Biochemical Engineering / Biotechnology. 51: 114–153.
  • Wingenfelder, U., Nowack, B., Furrer, G. and Schulin, R. 2005. Adsorption of Pb and Cd by amine-modified zeolite. Water Research. 39(14): 3287-3297.
  • Woolson, E. A. 1975. Arsenical pesticides. American Chemical Society. 7-176.
  • World Health Organization (WHO). 1996. Guidelines for drinking-water quality. Water sanitation and Health (WSH).
  • World Health Organization (WHO). 2001. Arsenic in drinking water, Fact Sheet No. 210.
  • Yavuz, , Gode, F., Pehlivan, E., Ozmert, S. and Sharma, Y.C. 2008. An economic removal of Cu2+ and Cr3+ on the new adsorbents: Pumice and polyacrylonitrile/pumice composite. Chemical Engineering Journal 137: 453–461.
  • Zhang, Z. and Perschbacher, P. 2003. Comparison of the zeolite sodium chabazite and activated charcoal for ammonia control in sealed containers. Asian Fisheries Science. 16: 141–145.
  • Zhou, and Boyd, C.E. 2014. Total Ammonia Nitrogen Removal from Aqueous Solutions by the Natural Zeolite, Mordenite: A Laboratory Test and Experimental Study. Aquaculture. 432: 252–257.

 

 

 

دیدگاهها

هیچ دیدگاهی برای این محصول نوشته نشده است.

اولین نفری باشید که دیدگاهی را ارسال می کنید برای “بررسي مقايسه ای اثرات زئولیت و پامیس در جذب آرسنیک از آب”

نشانی ایمیل شما منتشر نخواهد شد. بخش‌های موردنیاز علامت‌گذاری شده‌اند *

− 3 = 6

شناسه محصول: kord005 دسته: برچسب: , , , ,